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細(xì)胞膜紅色熒光染色試劑盒(DiI)

細(xì)胞膜紅色熒光染色試劑盒(DiI)

產(chǎn)品編號:CD2040

產(chǎn)品規(guī)格:200-1000次

數(shù)量
價(jià)格 ¥400

細(xì)胞膜紅色熒光染色試劑盒(DiI

貨號

產(chǎn)品名稱

規(guī)格

CD2040

細(xì)胞膜紅色熒光染色試劑盒(DiI

200-1000

 

產(chǎn)品介紹:

細(xì)胞膜紅色熒光染色試劑盒(DiI),Cell Plasma Membrane Staining Kit with DiI (Red Fluorescence)是一種以DiI為熒光探針,能夠快速靈敏地對細(xì)胞膜進(jìn)行紅色熒光染色標(biāo)記的試劑盒。


DiI在進(jìn)入細(xì)胞膜之前熒光非常弱,僅當(dāng)進(jìn)入到細(xì)胞膜后才可以被激發(fā)出很強(qiáng)的熒光。DiI被激發(fā)后可以發(fā)出橙紅色的熒光,DiI和磷酯雙層膜結(jié)合后的激發(fā)光譜和發(fā)射光譜參考上圖。其中,最大激發(fā)波長為549nm,最大發(fā)射波長為565nm。

本試劑盒如果用于流式細(xì)胞儀,每個(gè)樣品的檢測體系體積為0.5 ml時(shí),可以進(jìn)行200次檢測;96孔板每孔檢測體系的體積為100 μl時(shí)可以進(jìn)行1000次檢測。

產(chǎn)品組成:

組份貨號

產(chǎn)品名稱

規(guī)格

貯存

CD2040-01

DiI400×)

0.25 ml

-20

CD2040-02

染色緩沖液

100 ml

4

-

說明書

1

 

● 貯存:

DiI(400×) -20℃避光保存,一年有效。染色緩沖液可以4℃貯存。

使用說明:

1. 細(xì)胞膜染色工作液制備:

 

細(xì)胞膜染色工作液配制量

 

1 ml

10 ml

DiI400×

2.5 μl

25 μl

染色緩沖液

997.5 μl

9.975 ml

細(xì)胞膜染色工作液的用量:對于6、12、24、96孔板,每孔的細(xì)胞膜染色工作液分別為1~2ml、0.5~1ml、300~500μl和50~100μl;對于流式細(xì)胞樣品,每個(gè)樣品的細(xì)胞膜染色工作液為0.5ml;對于切片,可以根據(jù)切片大小,每個(gè)切片使用100-200μl的細(xì)胞膜染色工作液。

注:不同細(xì)胞的最佳染色濃度略有不同,細(xì)胞膜染色工作液的最終濃度建議根據(jù)不同細(xì)胞系和實(shí)驗(yàn)體系進(jìn)行優(yōu)化,可在1:100-1:400之間進(jìn)行調(diào)整。

2. 懸浮活細(xì)胞染色:

2.1 加入適當(dāng)體積的細(xì)胞膜染色工作液重懸細(xì)胞,使其密度為1×106/ml左右。

2.2 37℃避光孵育細(xì)胞5-20 min,不同的細(xì)胞最佳孵育時(shí)間不同。以5 min作為初始孵育時(shí)間,根據(jù)實(shí)際所用的細(xì)胞優(yōu)化染色時(shí)間,以得到最佳的熒光染色效果。

2.3 500×g常溫離心5 min。

2.4 吸除上清液,緩慢加入37℃預(yù)熱的細(xì)胞培養(yǎng)液重懸細(xì)胞。

2.5 用細(xì)胞培養(yǎng)重復(fù)漂洗沉淀一次。

2.6 流式細(xì)胞儀檢測,或?qū)⒓?xì)胞封片觀察,封片時(shí)請避免使用含有甘油或其它有機(jī)物的封片劑,否則會(huì)影響染色并增加熒光背景,可以直接用PBS封片,在熒光顯微鏡下觀察。

3. 貼壁活細(xì)胞染色:

3.1 將貼壁細(xì)胞種于細(xì)胞培養(yǎng)皿、多孔細(xì)胞培養(yǎng)板或者細(xì)胞爬片上。

3.2 吸除細(xì)胞培養(yǎng)液,用PBS洗滌細(xì)胞2次。

3.3 加入適當(dāng)體積的細(xì)胞膜染色工作液,輕輕晃動(dòng)使染料均勻覆蓋所有細(xì)胞。

3.4 37℃避光孵育細(xì)胞5-20 min,不同的細(xì)胞最佳培養(yǎng)時(shí)間不同。以5min作為初始孵育時(shí)間,根據(jù)實(shí)際所用的細(xì)胞優(yōu)化染色時(shí)間,以得到最佳的熒光染色效果。

3.5 吸除細(xì)胞膜染色工作液,用PBS洗滌2次,然后加入37℃預(yù)熱的細(xì)胞培養(yǎng)液即可在熒光顯微鏡下觀察。

4. 固定后細(xì)胞或切片的染色:

注:DiI不建議用于固定后細(xì)胞或組織的染色,因?yàn)榧?xì)胞固定后影響了細(xì)胞膜的結(jié)構(gòu),不能準(zhǔn)確反映熒光標(biāo)記位置。以下步驟僅供參考:

4.1. 使用4%多聚甲醛固定液進(jìn)行固定。

4.2 吸除固定液,用PBS洗滌細(xì)胞3遍。

4.3 使用配制在PBS中的0.1% Triton X-100進(jìn)行通透,常溫10 min。然后用PBS洗滌細(xì)胞3遍。

4.4按照免疫染色的方法進(jìn)行抗體的孵育或用其它染料進(jìn)行染色。注意:抗體孵育步驟中的封閉液、抗體稀釋液及洗滌液不能含有去垢劑。

4.5加入適當(dāng)體積的細(xì)胞膜染色工作液,輕輕晃動(dòng)使染料均勻覆蓋所有細(xì)胞或樣品。

4.6 37℃避光孵育5-20 min,最佳染色時(shí)間需要根據(jù)自己的實(shí)驗(yàn)條件摸索,以達(dá)到最佳的熒光染色效果。

4.7吸除細(xì)胞膜染色工作液,用PBS洗滌2-3次,隨后即可在熒光顯微鏡下觀察。

實(shí)驗(yàn)示例:


操作程序:293細(xì)胞調(diào)整密度1×105/ml,接種到6孔板中,培養(yǎng)30小時(shí);去除培養(yǎng)基,PBS漂洗一次;33342染色37度10分鐘,去除33342染色液,加1.5 ml PBS,觀察拍照(40×)(圖A);去除PBS,DiI染色,37度10分鐘,去除DiI染色液,加1.5ml PBS,觀察拍照(40×)(圖B)


 
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